The error associated with visual ex

The error associated with visual examination of yeast is eliminated by the use of electronic particle counters. These devices rely on suspending yeast in an electrolyte and passing the cells through a narrow orifice. Cells are registered in response to a change in electrical impedance. Most instruments can discriminate between particles of different sizes, reducing the error due to non-yeast solids. Nevertheless, any particle of similar size to yeast cells registers in the result. Small yeast flocs or chains of cells introduce a further source of error. Problems associated with flocs can be reduced by prior treatment with a deflocculating agent such as maltose. This method is rapid and is most suitable for checking relatively low yeast counts such as are encountered in newly pitched worts or cask beers at rack.
The classical technique for determining cell concentration is the plate count. A sample of the test suspension is serially diluted and aliquots are spread onto plates of selected solidified medium. Plates are incubated under suitable conditions for the test organism and growth is allowed to proceed until discrete colonies are formed. These are counted and it is assumed that each arises from a single cell, therefore the colony count is directly related to the cell concentration in the test suspension. This approach has several advantages. It is possible to use selective media so that mixed populations of cells can be identified. It only detects viable organisms. The precision of the method is low since not all viable cells grow to form colonies and flocs or chains do not develop into discrete colonies. The method is slow, although it is possible to use a rapid slide culture technique where cells are detected as micro-colonies. This reduces incubation times from a few days to a few hours. This method provides historical data only and is mainly used for checking strain purity and for detecting contaminants.
Other indirect methods of biomass measurement are calibrated against one of the two direct approaches. Thus, an empirical relationship is established between biomass concentration and the measured parameter. Most of these approaches have no value in brewing. Two methods are used in brewing because they employ sensors which provide automatic in-line measurement of biomass concentration. The first detects yeast cells by light scattering. The second relies on the dielectric properties of intact cell membranes.
The optical device uses a sensor that detects yeast in response to near infra-red radiation (Reiss, 1986). The control system doses yeast into wort to achieve a predetermined set-point of light scattering. This set-point is empirically derived for each yeast strain. A dual beam arrangement corrects for light scattering due to non-yeast solids in the unpitched wort. The shortcomings of this approach are that it does not correct for non-yeast solids present in the yeast slurry, it cannot be used with very flocculent strains and it requires a separate viability correction.
From an electrical standpoint, yeast cells suspended in beer or wort comprise a conducting medium and conducting cytoplasm, separated by a non-conducting plasma membrane. This juxtaposition allows cells to function as capacitors when subject to radiation of a suitable wavelength. In the case of yeast cells this is in the range of radio waves (Harris et al., 1987). The measured capacitance is proportional to the total volume fraction bounded by membrane within the operating field. Since yeast cells of a given strain, grown under defined conditions, are of a relatively constant size, measured capacitance is directly proportional to yeast biomass concentration. A biomass probe based on this principle is used in production brewing. The measured capacitance can be calibrated against cell number or a derivative of cell mass. A separate calibration curve is required for each strain.

Results (Vietnamese) 1:

Lỗi liên quan đến các kiểm tra trực quan của nấm men được loại bỏ bằng cách sử dụng công tơ điện tử hạt. Những thiết bị dựa vào đình chỉ nấm men trong một chất điện phân và đi qua các tế bào thông qua một lỗ hẹp. Tế bào được đăng ký để đáp ứng với một sự thay đổi trong điện trở kháng. Hầu hết các công cụ có thể phân biệt đối xử giữa các hạt kích thước khác nhau, giảm lỗi do chất rắn men. Tuy nhiên, bất kỳ hạt các kích thước tương tự cho các tế bào nấm men đăng ký trong kết quả. Nhỏ nấm men flocs hoặc dây chuyền của các tế bào giới thiệu một nguồn lỗi hơn nữa. Trước khi điều trị với một đại lý deflocculating chẳng hạn như maltose có thể giảm các vấn đề liên quan đến flocs. Phương pháp này là nhanh chóng và là thích hợp nhất cho việc kiểm tra tương đối thấp nấm men đếm như gặp phải trong vừa được pitched worts hoặc thùng bia tại rack.Các kỹ thuật cổ điển để xác định nồng độ tế bào là số tấm. Một mẫu thử nghiệm hệ thống treo serially pha loãng và aliquots được lan truyền vào tấm đã chọn trung kiên cố hóa. Tấm được ủ trong các điều kiện thích hợp cho các sinh vật thử nghiệm và phát triển được cho phép để tiếp tục cho đến khi rời rạc thuộc địa được thành lập. Đây được tính và nó giả định rằng mỗi phát sinh từ một tế bào đơn lẻ, do đó số thuộc địa trực tiếp liên quan đến nồng độ tế bào trong việc đình chỉ thử nghiệm. Cách tiếp cận này có một số lợi thế. Có thể sử dụng phương tiện truyền thông chọn lọc để các quần thể hỗn hợp của các tế bào có thể được xác định. Nó chỉ phát hiện khả thi sinh vật. Độ chính xác của phương pháp là thấp vì không phải tất cả các tế bào khả thi phát triển để hình thức thuộc địa và flocs hoặc chuỗi không phát triển thành rời rạc thuộc địa. Phương pháp này là chậm, mặc dù nó có thể sử dụng một kỹ thuật văn hóa nhanh chóng slide nơi các tế bào được phát hiện như vi-thuộc địa. Điều này làm giảm thời gian ủ bệnh từ vài ngày đến vài giờ. Phương pháp này cung cấp dữ liệu lịch sử và chủ yếu được sử dụng cho việc kiểm tra căng thẳng tinh khiết và để phát hiện các chất gây ô nhiễm.Các phương pháp gián tiếp của nhiên liệu sinh học đo lường được kiểm định chống lại một trong hai cách tiếp cận trực tiếp. Vì vậy, một mối quan hệ thực nghiệm được thành lập giữa tập trung nhiên liệu sinh học và các thông số đo. Hầu hết các phương pháp tiếp cận có không có giá trị trong pha. Hai phương pháp được sử dụng trong sản xuất bia vì họ sử dụng bộ cảm biến cung cấp tự động trong dòng đo lường của nhiên liệu sinh học tập trung. Người đầu tiên phát hiện tế bào men bằng sự tán xạ ánh sáng. Thứ hai dựa vào các đặc tính cách điện của màng tế bào còn nguyên vẹn.Thiết bị quang học sử dụng một bộ cảm biến phát hiện nấm men để đáp ứng với gần bức xạ bằng tia hồng ngoại (Reiss, 1986). Hệ thống điều khiển liều nấm men vào wort để đạt được một bộ định trước điểm của tán xạ ánh sáng. Này điểm đặt empirically là nguồn gốc cho mỗi chủng nấm men. Một sắp xếp kép chùm sửa chữa cho các tán xạ ánh sáng do-men chất rắn trong unpitched wort. Những thiếu sót của phương pháp này là rằng nó không đúng cho chất rắn men trình bày trong bùn nấm men, nó không thể được sử dụng với rất flocculent chủng và nó đòi hỏi một sự điều chỉnh khả năng riêng biệt.Từ một quan điểm điện, tế bào nấm men bị đình chỉ trong bia hoặc wort bao gồm một tiến hành phương tiện truyền thông và tiến hành các tế bào chất, ngăn cách bởi một màng tế bào plasma phòng không tiến hành. Sự đặt cạnh nhau này cho phép các tế bào để hoạt động như tụ khi tùy thuộc vào bức xạ của một bước sóng phù hợp. Trong trường hợp của tế bào nấm men, điều này là trong phạm vi sóng vô tuyến (Harris và ctv., 1987). Đo điện dung là tỷ lệ thuận với tổng khối lượng phần giáp màng trong lĩnh vực hoạt động. Kể từ khi tế bào nấm men của một căng thẳng nhất định, phát triển điều kiện được xác định, có một kích thước tương đối liên tục, đo điện dung là tỷ lệ thuận với nấm men nhiên liệu sinh học tập trung. Một thăm dò nhiên liệu sinh học dựa trên nguyên tắc này được sử dụng trong sản xuất pha. Đo điện dung có thể được hiệu chỉnh với số lượng tế bào hoặc bắt nguồn từ tế bào khối lượng. Một đường cong hiệu chuẩn riêng biệt là cần thiết cho mỗi căng thẳng.

Results (Vietnamese) 2:

Các lỗi liên quan đến kiểm tra trực quan của nấm men được loại bỏ bằng cách sử dụng máy đếm hạt điện tử. Các thiết bị này dựa vào đình chỉ men trong một chất điện phân và đi qua các tế bào thông qua một lỗ hẹp. Các tế bào được đăng ký trong phản ứng với sự thay đổi trở kháng. Hầu hết các công cụ có thể phân biệt đối xử giữa các hạt có kích thước khác nhau, làm giảm các lỗi do các chất rắn không men. Tuy nhiên, các hạt có kích thước tương tự như tế bào nấm men đăng ký trong kết quả. Flocs men nhỏ hoặc dây chuyền của các tế bào giới thiệu một nguồn tiếp tục báo lỗi. Vấn đề liên quan flocs có thể được giảm bằng cách điều trị trước với một đại lý deflocculating như maltose. Phương pháp này là nhanh chóng và phù hợp nhất cho việc kiểm tra số lượng nấm men tương đối thấp như đang gặp phải trong worts mới dốc, bia thùng tại rack.
Các kỹ thuật cổ điển để xác định nồng độ tế bào là số lượng tấm. Một ví dụ về việc đình chỉ kiểm tra được pha loãng và phân ước được trải lên tấm được chọn lọc từ trung kiên cố. Tấm được ủ trong điều kiện thích hợp cho vi khuẩn thử nghiệm và phát triển được phép tiến hành cho đến khi thuộc địa riêng biệt được hình thành. Đây là những tính và nó được giả định rằng mỗi phát sinh từ một tế bào duy nhất, do đó số lượng khuẩn lạc có liên quan trực tiếp với nồng độ tế bào trong việc đình chỉ thi. Cách tiếp cận này có nhiều ưu điểm. Có thể sử dụng phương tiện truyền thông chọn lọc, mà quần thể hỗn hợp của các tế bào có thể được xác định. Nó chỉ phát hiện sinh vật hữu hiệu. Độ chính xác của phương pháp này là thấp vì không phải tất cả các tế bào sống phát triển để tạo thành thuộc địa và flocs hoặc dây chuyền không phát triển thành khuẩn lạc rời rạc. Phương pháp này là chậm, mặc dù nó có thể sử dụng một kỹ thuật nuôi trượt nhanh chóng mà các tế bào được phát hiện như là vi khuẩn. Điều này làm giảm thời gian ủ bệnh từ vài ngày đến vài giờ. Phương pháp này cung cấp dữ liệu lịch sử và chỉ được sử dụng chủ yếu để kiểm tra độ tinh khiết căng thẳng và để phát hiện chất gây ô nhiễm.
Phương pháp gián tiếp đo lường khác sinh khối được hiệu chỉnh theo một trong hai cách tiếp cận trực tiếp. Như vậy, một mối quan hệ thực nghiệm được thiết lập giữa nồng độ sinh khối và các tham số đo. Hầu hết các phương pháp này không có giá trị trong sản xuất bia. Hai phương pháp được sử dụng trong sản xuất bia vì họ sử dụng cảm biến mà cung cấp tự động trong dòng đo nồng độ sinh khối. Người đầu tiên phát hiện các tế bào nấm men do ánh sáng. Thứ hai dựa trên các tính chất điện môi của màng tế bào nguyên vẹn.
Các thiết bị quang học sử dụng một cảm biến phát hiện nấm men để đáp ứng với gần bức xạ hồng ngoại (Reiss, 1986). Các liều lượng hệ thống kiểm soát nấm men vào dịch nha để đạt được một định trước điểm thiết lập của sự tán xạ ánh sáng. Điều này thiết lập điểm được thực nghiệm thu được cho mỗi chủng nấm men. Một sự sắp xếp chùm kép sửa chữa cho tán xạ ánh sáng do các chất rắn không men trong dịch nha unpitched. Những thiếu sót của phương pháp này là nó không đúng cho các chất rắn không men có trong bùn nấm men, nó không thể được sử dụng với các chủng rất flocculent và nó đòi hỏi một sự điều chỉnh khả năng tồn tại riêng biệt.
Từ một điểm điện, các tế bào nấm men bị đình chỉ trong bia hoặc wort bao gồm một phương tiện thực hiện và tiến hành các tế bào chất, cách nhau bằng một màng plasma không dẫn điện. Kề nhau này cho phép các tế bào có chức năng như tụ điện khi bị bức xạ có bước sóng thích hợp. Trong trường hợp của các tế bào nấm men này là trong phạm vi của sóng radio (Harris et al., 1987). Điện dung đo là tỷ lệ thuận với tổng khối lượng phần bao bọc bởi màng trong lĩnh vực hoạt động. Kể từ khi các tế bào nấm men của một dòng nhất định, trồng trong điều kiện xác định, có kích thước tương đối không đổi, điện dung được đo là tỷ lệ thuận với nồng độ sinh khối nấm men. Một thăm dò sinh khối dựa trên nguyên tắc này được sử dụng trong sản xuất bia sản xuất. Điện dung đo có thể được hiệu chỉnh theo số lượng tế bào hoặc một dẫn xuất của khối tế bào. Một đường cong hiệu chuẩn riêng biệt là cần thiết cho mỗi chủng.