Apart from using antibodies, short

Apart from using antibodies, short DNA sequences called aptamers
have been used as highly specific bioreceptors for high profi-
ciency detection of a wide range of analytes including bacteria.
Zelada-Guillén et al. (2009) used aptamer-functionalized CNTs
for selective detection of Salmonella Typhi from a complex mixture.
SWNTs were carboxylated via acid treatment and sprayed onto a
3 mm diameter glassy carbon electrode (GCE) to achieve a
30 lm-thick SWNT network. The aptamer was modified with a
five-carbon spacer and an amine group (–(CH2)5NH2) at the 30
end and was covalently bound to the carboxylic groups on the
sidewalls of SWNTs using carbodiimide chemistry. Upon introduction
of the target bacteria, a conformational change in the aptamer
is induced due to separation of the phosphate groups from the
SWNT surface. This changes the charge density near the electrode
surface and a subsequent change in potential is recorded between
the SWNT–aptamer modified GCE (working electrode) and Ag/AgCl
electrode (reference). The potentiometric response of the biosensor
was measured for bacteria concentrations varying from 0.2 cfu/ml
(1 CFU in 5 ml PB) to 106 cfu/mL. As shown in Fig. 8, upon increasing
concentration of bacteria, the potential difference increased but
the magnitude of signal decreased, possibly due to the saturation
of binding sites. The average response was reported to be
1.87 mV per log of bacteria concentration. The specificity of the
sensor was demonstrated by testing against non-target bacteria
(Escherichia coli and Lactobacillus casei). Similarly, So et al. (2008)
reported an aptamer-functionalized SWNT-based FET for selective
and sensitive detection of E. coli.

Results (Thai) 1:

Apart from using antibodies, short DNA sequences called aptamershave been used as highly specific bioreceptors for high profi-ciency detection of a wide range of analytes including bacteria.Zelada-Guillén et al. (2009) used aptamer-functionalized CNTsfor selective detection of Salmonella Typhi from a complex mixture.SWNTs were carboxylated via acid treatment and sprayed onto a3 mm diameter glassy carbon electrode (GCE) to achieve a30 lm-thick SWNT network. The aptamer was modified with afive-carbon spacer and an amine group (–(CH2)5NH2) at the 30end and was covalently bound to the carboxylic groups on thesidewalls of SWNTs using carbodiimide chemistry. Upon introductionof the target bacteria, a conformational change in the aptameris induced due to separation of the phosphate groups from theSWNT surface. This changes the charge density near the electrodesurface and a subsequent change in potential is recorded betweenthe SWNT–aptamer modified GCE (working electrode) and Ag/AgClelectrode (reference). The potentiometric response of the biosensorwas measured for bacteria concentrations varying from 0.2 cfu/ml(1 CFU in 5 ml PB) to 106 cfu/mL. As shown in Fig. 8, upon increasingconcentration of bacteria, the potential difference increased butthe magnitude of signal decreased, possibly due to the saturationof binding sites. The average response was reported to be1.87 mV per log of bacteria concentration. The specificity of theเซนเซอร์ถูกแสดง โดยทดสอบกับเชื้อแบคทีเรียไม่ใช่เป้าหมาย(Escherichia coli และบ้านแลคโตบาซิลลัส) ในทำนองเดียวกัน ดังนั้น et al. (2008)รายงานการปรับหมู่ฟังก์ชั่น aptamer ใช้ SWNT FET สำหรับเลือกและตรวจพบ E. coli สำคัญ

Results (Thai) 2:

นอกเหนือจากการใช้แอนติบอดีลำดับดีเอ็นเอสั้นเรียกว่า aptamers
มีการใช้เป็น bioreceptors เจาะจงสำหรับ profi- สูง
การตรวจสอบ ciency ของความหลากหลายของการวิเคราะห์รวมทั้งเชื้อแบคทีเรีย.
Zelada-Guillén et al, (2009) ที่ใช้ CNTs aptamer-ฟังก์ชัน
สำหรับการตรวจสอบการคัดเลือกของเชื้อ Salmonella typhi จากส่วนผสมที่ซับซ้อน.
SWNTs ถูก carboxylated ผ่านการรักษากรดและฉีดพ่นลงบน
3 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลางเหลือบคาร์บอนอิเล็กโทรด (GCE) เพื่อให้บรรลุ
เครือข่าย SWNT 30 LM-หนา aptamer ถูกปรับเปลี่ยนด้วย
spacer ห้าคาร์บอนไดออกไซด์และกลุ่มเอมีน (- (CH2) 5NH2) ที่ 30
end และถูกผูกโควาเลนต์กับกลุ่มคาร์บอกซิบน
ผนังของ SWNTs ใช้ carbodiimide เคมี เมื่อการแนะนำ
ของแบคทีเรียเป้าหมายที่มีการเปลี่ยนแปลงในโครงสร้าง aptamer
ถูกเหนี่ยวนำให้เกิดเนื่องจากการแยกตัวของกลุ่มฟอสเฟตจาก
พื้นผิว SWNT นี้จะเปลี่ยนค่าความหนาแน่นใกล้ขั้ว
พื้นผิวและการเปลี่ยนแปลงที่อาจเกิดขึ้นตามมาในจะถูกบันทึกไว้ระหว่าง
SWNT-aptamer GCE แก้ไข (อิเล็กโทรดที่ทำงาน) และ AG / AgCl
อิเล็กโทรด (อ้างอิง) การตอบสนอง potentiometric ไบโอเซนเซอร์
วัดความเข้มข้นของแบคทีเรียที่แตกต่างจาก 0.2 cfu / ml
(1 โคโลนีในขนาด 5 ml PB) 106 CFU / มิลลิลิตร ดังแสดงในรูป 8 เมื่อการเพิ่ม
ความเข้มข้นของแบคทีเรียที่แตกต่างที่มีศักยภาพเพิ่มขึ้น แต่
ขนาดของสัญญาณที่ลดลงอาจจะเป็นเพราะความอิ่มตัว
ของเว็บไซต์ที่มีผลผูกพัน การตอบสนองโดยเฉลี่ยก็จะ
1.87 mV ต่อเข้าสู่ระบบของความเข้มข้นของแบคทีเรีย ความจำเพาะของ
เซ็นเซอร์ก็แสดงให้เห็นโดยการทดสอบกับแบคทีเรียที่ไม่ใช่เป้าหมาย
(Escherichia coli และ Lactobacillus casei) ในทำนองเดียวกันดังนั้น et al, (2008)
รายงาน FET SWNT ตาม aptamer-ฟังก์ชันสำหรับการคัดเลือก
ตรวจสอบและมีความไวของเชื้อ E. coli