- Text
- History
Total phenolics were extracted acco
Total phenolics were extracted according to protocol described
in Tomás-Barberán et al. (2001) using water:methanol (2:8)
containing 2 mM NaF (to inactivate polyphenol oxidase activity
and prevent phenolic degradation) and quantified in duplicated
using the Folin–Ciocalteu reagent and results (mean ± SE) were
expressed as mg gallic acid equivalent 100 g−1 fresh weight. For
individual phenolic compounds,the protocol described by GironésVilaplana
et al. (2012) was followed. Briefly, lyophilised samples
(100 mg) were mixed with 1 mL of methanol/formic acid/water
(25:1:24, v/v/v), vortexed, sonicatedinanultrasonic bathfor 60 min
and centrifuged at 10,500 × g for 5 min The supernatant was filtered
through a 0.45-m PVDF filter (Millex HV13, Millipore, Bedford,
MA, USA) and used for HPLC analysis. The HPLC-DAD-ESI/MSn analyses
were carried out in an Agilent HPLC 1100 series machine
equipped with a photodiode array detector and a mass detector
in series (Agilent Technologies, Waldbronn, Germany). The equipment
consisted of a binary pump (model G1312A), an autosampler(model G1313A), a degasser (model G1322A), and a photodiode
array detector (model G1315B). The HPLC system was controlled by
ChemStation software (Agilent, version 08.03). The mass detector
was an ion trap spectrometer (model G2445A), equipped with an
electrospray ionisation interface and controlled by LCMSD software
(Agilent, version 4.1). The ionisation conditions were 350 ◦C and
4 kV, for capillary temperature and voltage, respectively. The nebuliser
pressure and nitrogen flow rate were 65.0 psi and 11 L/min,
respectively. The full-scan mass covered the range from 100 to
1200 m/z. Collision-induced fragmentation experiments were performed
in the ion trap using helium as the collision gas, with voltage
ramping cycles from 0.3 up to 2V. The mass spectrometry data
were acquired in the positive ionisation mode for anthocyanins
and in the negative ionisation mode for other flavonoids. The MSn
was carried out in the automatic mode on the more abundant
fragment ion in MS (n − 1). The HPLC was equipped with a Luna
C18 column (25 cm × 0.46 cm i.d., 5 m particle size; Phenomenex,
Macclesfield, UK) with a C18 security guard (4.0 mm × 3.0 mm) cartridge
system (Phenomenex, Macclesfield, UK). Water:formic acid
(99:5, v/v) and acetonitrile were used as mobile phases A and B,
respectively, with a flow rate of 1 mL min−1. The linear gradient
started with 8% of solvent B, reaching 15% solvent B at 25 min,
22% at 55, and 40% at 60 min, which was maintained up to 70 min
The injection volume was 20 L. Chromatograms were recorded
at 280, 320, 360, and 520 nm Different phenolics were characterised
by chromatographic comparison with analytical standards
as well as quantified by the absorbance of their corresponding
peaks. Hydroxycinnamic derivatives, p-coumaroylquinic acid and
hydroxybenzoic acid were characterised by chromatographic comparisonaccordingly
toprevious reports basedonretentiontime and
UV–vis spectra at 280 nm (Tomás-Barberán et al., 2001). Anthocyanin
standards (cyanidin 3-glucoside, cyanidin 3-rutinoside and
pelargonidin 3-rutinoside) were purchased from Polyphenols SA
(Sandnes, Norway) and detected at 520 nm Cinnamic acids were
quantified as 5-O-caffeoylquinic acid at 320 nm, and flavonols as
quercetin 3-O-rutinoside at 360 nm and expressed as mg 100 g−1
fresh weight (mean ± SE).
in Tomás-Barberán et al. (2001) using water:methanol (2:8)
containing 2 mM NaF (to inactivate polyphenol oxidase activity
and prevent phenolic degradation) and quantified in duplicated
using the Folin–Ciocalteu reagent and results (mean ± SE) were
expressed as mg gallic acid equivalent 100 g−1 fresh weight. For
individual phenolic compounds,the protocol described by GironésVilaplana
et al. (2012) was followed. Briefly, lyophilised samples
(100 mg) were mixed with 1 mL of methanol/formic acid/water
(25:1:24, v/v/v), vortexed, sonicatedinanultrasonic bathfor 60 min
and centrifuged at 10,500 × g for 5 min The supernatant was filtered
through a 0.45-m PVDF filter (Millex HV13, Millipore, Bedford,
MA, USA) and used for HPLC analysis. The HPLC-DAD-ESI/MSn analyses
were carried out in an Agilent HPLC 1100 series machine
equipped with a photodiode array detector and a mass detector
in series (Agilent Technologies, Waldbronn, Germany). The equipment
consisted of a binary pump (model G1312A), an autosampler(model G1313A), a degasser (model G1322A), and a photodiode
array detector (model G1315B). The HPLC system was controlled by
ChemStation software (Agilent, version 08.03). The mass detector
was an ion trap spectrometer (model G2445A), equipped with an
electrospray ionisation interface and controlled by LCMSD software
(Agilent, version 4.1). The ionisation conditions were 350 ◦C and
4 kV, for capillary temperature and voltage, respectively. The nebuliser
pressure and nitrogen flow rate were 65.0 psi and 11 L/min,
respectively. The full-scan mass covered the range from 100 to
1200 m/z. Collision-induced fragmentation experiments were performed
in the ion trap using helium as the collision gas, with voltage
ramping cycles from 0.3 up to 2V. The mass spectrometry data
were acquired in the positive ionisation mode for anthocyanins
and in the negative ionisation mode for other flavonoids. The MSn
was carried out in the automatic mode on the more abundant
fragment ion in MS (n − 1). The HPLC was equipped with a Luna
C18 column (25 cm × 0.46 cm i.d., 5 m particle size; Phenomenex,
Macclesfield, UK) with a C18 security guard (4.0 mm × 3.0 mm) cartridge
system (Phenomenex, Macclesfield, UK). Water:formic acid
(99:5, v/v) and acetonitrile were used as mobile phases A and B,
respectively, with a flow rate of 1 mL min−1. The linear gradient
started with 8% of solvent B, reaching 15% solvent B at 25 min,
22% at 55, and 40% at 60 min, which was maintained up to 70 min
The injection volume was 20 L. Chromatograms were recorded
at 280, 320, 360, and 520 nm Different phenolics were characterised
by chromatographic comparison with analytical standards
as well as quantified by the absorbance of their corresponding
peaks. Hydroxycinnamic derivatives, p-coumaroylquinic acid and
hydroxybenzoic acid were characterised by chromatographic comparisonaccordingly
toprevious reports basedonretentiontime and
UV–vis spectra at 280 nm (Tomás-Barberán et al., 2001). Anthocyanin
standards (cyanidin 3-glucoside, cyanidin 3-rutinoside and
pelargonidin 3-rutinoside) were purchased from Polyphenols SA
(Sandnes, Norway) and detected at 520 nm Cinnamic acids were
quantified as 5-O-caffeoylquinic acid at 320 nm, and flavonols as
quercetin 3-O-rutinoside at 360 nm and expressed as mg 100 g−1
fresh weight (mean ± SE).
0/5000
รวม phenolics ได้แยกตามโพรโทคอลในการอธิบายใน Tomás Barberán et al. (2001) ใช้น้ำ: เมทานอล (2:8)ประกอบด้วย 2 มม. NaF (เพื่อยก polyphenol oxidase กิจกรรมและป้องกันการสลายตัวฟีนอ) และ quantified ในซ้ำใช้รีเอเจนต์ Folin – Ciocalteu และผลลัพธ์ (เฉลี่ย± SE) ได้แสดงเป็นมิลลิกรัมกรด gallic เทียบเท่า 100 g−1 สดน้ำหนัก สำหรับม่อฮ่อมละ โพรโทคอลโดย GironésVilaplanaal. ร้อยเอ็ด (2012) ได้ตาม Lyophilised ตัวอย่างสั้น ๆ(100 มิลลิกรัม) รวมกับ 1 มิลลิลิตรของกรด formic/เม ทานอล/น้ำ(25:1:24, v/v/v), vortexed, sonicatedinanultrasonic bathfor 60 นาทีและ centrifuged ที่ 10,500 × g สำหรับ 5 นาที supernatant ที่ถูกกรองผ่านตัวกรอง PVDF 0.45 m (Millex HV13 มาก กลา สโกว์MA, USA) และใช้สำหรับวิเคราะห์ HPLC วิเคราะห์ HPLC-พ่อ-ESI/MSnได้ดำเนินการ Agilent HPLC 1100 ชุดเครื่องการจับเรย์ photodiode และจับโดยรวมในชุด (Agilent เทคโนโลยี Waldbronn เยอรมนี) อุปกรณ์ประกอบด้วยปั๊มแบบไบนารี (รุ่น G1312A), การ autosampler(model G1313A), degasser (รุ่น G1322A), และมี photodiodeเรย์จับ (รุ่น G1315B) ระบบ HPLC ถูกควบคุมโดยChemStation ซอฟต์แวร์ (Agilent รุ่น 08.03) เครื่องตรวจจับโดยรวมมีการตรวจจับไอออนสเปกโตรมิเตอร์ (รุ่น G2445A), มีการวิธีพ่นละอองไฟฟ้า ionisation อินเทอร์เฟซ และควบคุม โดยซอฟต์แวร์ LCMSD(Agilent เวอร์ชัน 4.1) เงื่อนไข ionisation ได้ 350 ◦C และ4 kV เส้นเลือดฝอยอุณหภูมิและแรงดันไฟฟ้า ตามลำดับ Nebuliserความดันและไนโตรเจนไหลอัตราได้ 65.0 psi และ 11 L/minตามลำดับ การสแกนเต็มรูปแบบโดยรวมครอบคลุมตั้งแต่ 100 ไปดำเนินการทดลองชนกันทำให้เกิดการกระจายตัว 1200 m/zในการตรวจจับไอออนที่ใช้ฮีเลียมเป็นก๊าซชน มีแรงดันไฟฟ้าวงจรที่กระโจนจาก 0.3 ถึง 2V ข้อมูลสเปกโตรเมทได้รับมาในโหมด ionisation บวกสำหรับ anthocyaninsและ ในโหมด ionisation ลบสำหรับ flavonoids อื่น ๆ MSnได้ดำเนินการในโหมดอัตโนมัติในชุกชุมมากไอออนส่วนใน MS (n − 1) HPLC มีพร้อมกับลูน่าคอลัมน์ C18 (ประชาชน 25 ซม. × 0.46 ซม. ขนาด 5 เมตรอนุภาค PhenomenexMacclesfield, UK) กับตลับหมึก C18 ยามรักษาความปลอดภัย (4.0 มม. × 3.0 mm)ระบบ (Phenomenex, Macclesfield, UK) น้ำ: กรด(99:5, v/v) และใช้ acetonitrile เป็นโมบายระยะ A และ Bด้วยอัตราการไหลของ min−1 1 mL ตามลำดับ การไล่ระดับสีแบบเส้นตรงเริ่มต้นกับ 8% ของตัวทำละลาย B ถึง 15% ตัวทำละลาย B ในนาทีที่ 2522% 55 และ 40% ที่ 60 นาที ที่ถูกรักษาไว้ถึง 70 นาทีปริมาณฉีดได้บันทึก 20 L. Chromatogramsที่ 280, 320, 360 และ 520 nm phenolics ต่าง ๆ ได้ดำเนินโดยการเปรียบเทียบมาตรฐานวิเคราะห์ chromatographicเป็น quantified โดย absorbance ของตนที่สอดคล้องกันยอดเขา Hydroxycinnamic อนุพันธ์ กรด p-coumaroylquinic และกรด hydroxybenzoic มีประสบการ์ chromatographic comparisonaccordinglytoprevious รายงาน basedonretentiontime และแรมสเป็คตรา UV – vis ที่ 280 nm (Tomás-Barberán และ al., 2001) มีโฟเลทสูงมาตรฐาน (cyanidin 3-glucoside, cyanidin 3-rutinoside และ3 pelargonidin-rutinoside) ซื้อจาก SA โพลีฟีน(เพียง นอร์เวย์) และพบที่ 520 nm กรดทรานส์-ซินนามิกได้quantified เป็นกรด 5-O-caffeoylquinic 320 nm และ flavonols เป็นquercetin 3-O-rutinoside ที่ 360 nm และแสดงเป็น g−1 มิลลิกรัมต่อ 100น้ำหนักสด (เฉลี่ย± SE)
Being translated, please wait..
Total phenolics were extracted according to protocol described
in Tomás-Barberán et al. (2001) using water:methanol (2:8)
containing 2 mM NaF (to inactivate polyphenol oxidase activity
and prevent phenolic degradation) and quantified in duplicated
using the Folin–Ciocalteu reagent and results (mean ± SE) were
expressed as mg gallic acid equivalent 100 g−1 fresh weight. For
individual phenolic compounds,the protocol described by GironésVilaplana
et al. (2012) was followed. Briefly, lyophilised samples
(100 mg) were mixed with 1 mL of methanol/formic acid/water
(25:1:24, v/v/v), vortexed, sonicatedinanultrasonic bathfor 60 min
and centrifuged at 10,500 × g for 5 min The supernatant was filtered
through a 0.45-m PVDF filter (Millex HV13, Millipore, Bedford,
MA, USA) and used for HPLC analysis. The HPLC-DAD-ESI/MSn analyses
were carried out in an Agilent HPLC 1100 series machine
equipped with a photodiode array detector and a mass detector
in series (Agilent Technologies, Waldbronn, Germany). The equipment
consisted of a binary pump (model G1312A), an autosampler(model G1313A), a degasser (model G1322A), and a photodiode
array detector (model G1315B). The HPLC system was controlled by
ChemStation software (Agilent, version 08.03). The mass detector
was an ion trap spectrometer (model G2445A), equipped with an
electrospray ionisation interface and controlled by LCMSD software
(Agilent, version 4.1). The ionisation conditions were 350 ◦C and
4 kV, for capillary temperature and voltage, respectively. The nebuliser
pressure and nitrogen flow rate were 65.0 psi and 11 L/min,
respectively. The full-scan mass covered the range from 100 to
1200 m/z. Collision-induced fragmentation experiments were performed
in the ion trap using helium as the collision gas, with voltage
ramping cycles from 0.3 up to 2V. The mass spectrometry data
were acquired in the positive ionisation mode for anthocyanins
and in the negative ionisation mode for other flavonoids. The MSn
was carried out in the automatic mode on the more abundant
fragment ion in MS (n − 1). The HPLC was equipped with a Luna
C18 column (25 cm × 0.46 cm i.d., 5 m particle size; Phenomenex,
Macclesfield, UK) with a C18 security guard (4.0 mm × 3.0 mm) cartridge
system (Phenomenex, Macclesfield, UK). Water:formic acid
(99:5, v/v) and acetonitrile were used as mobile phases A and B,
respectively, with a flow rate of 1 mL min−1. The linear gradient
started with 8% of solvent B, reaching 15% solvent B at 25 min,
22% at 55, and 40% at 60 min, which was maintained up to 70 min
The injection volume was 20 L. Chromatograms were recorded
at 280, 320, 360, and 520 nm Different phenolics were characterised
by chromatographic comparison with analytical standards
as well as quantified by the absorbance of their corresponding
peaks. Hydroxycinnamic derivatives, p-coumaroylquinic acid and
hydroxybenzoic acid were characterised by chromatographic comparisonaccordingly
toprevious reports basedonretentiontime and
UV–vis spectra at 280 nm (Tomás-Barberán et al., 2001). Anthocyanin
standards (cyanidin 3-glucoside, cyanidin 3-rutinoside and
pelargonidin 3-rutinoside) were purchased from Polyphenols SA
(Sandnes, Norway) and detected at 520 nm Cinnamic acids were
quantified as 5-O-caffeoylquinic acid at 320 nm, and flavonols as
quercetin 3-O-rutinoside at 360 nm and expressed as mg 100 g−1
fresh weight (mean ± SE).
in Tomás-Barberán et al. (2001) using water:methanol (2:8)
containing 2 mM NaF (to inactivate polyphenol oxidase activity
and prevent phenolic degradation) and quantified in duplicated
using the Folin–Ciocalteu reagent and results (mean ± SE) were
expressed as mg gallic acid equivalent 100 g−1 fresh weight. For
individual phenolic compounds,the protocol described by GironésVilaplana
et al. (2012) was followed. Briefly, lyophilised samples
(100 mg) were mixed with 1 mL of methanol/formic acid/water
(25:1:24, v/v/v), vortexed, sonicatedinanultrasonic bathfor 60 min
and centrifuged at 10,500 × g for 5 min The supernatant was filtered
through a 0.45-m PVDF filter (Millex HV13, Millipore, Bedford,
MA, USA) and used for HPLC analysis. The HPLC-DAD-ESI/MSn analyses
were carried out in an Agilent HPLC 1100 series machine
equipped with a photodiode array detector and a mass detector
in series (Agilent Technologies, Waldbronn, Germany). The equipment
consisted of a binary pump (model G1312A), an autosampler(model G1313A), a degasser (model G1322A), and a photodiode
array detector (model G1315B). The HPLC system was controlled by
ChemStation software (Agilent, version 08.03). The mass detector
was an ion trap spectrometer (model G2445A), equipped with an
electrospray ionisation interface and controlled by LCMSD software
(Agilent, version 4.1). The ionisation conditions were 350 ◦C and
4 kV, for capillary temperature and voltage, respectively. The nebuliser
pressure and nitrogen flow rate were 65.0 psi and 11 L/min,
respectively. The full-scan mass covered the range from 100 to
1200 m/z. Collision-induced fragmentation experiments were performed
in the ion trap using helium as the collision gas, with voltage
ramping cycles from 0.3 up to 2V. The mass spectrometry data
were acquired in the positive ionisation mode for anthocyanins
and in the negative ionisation mode for other flavonoids. The MSn
was carried out in the automatic mode on the more abundant
fragment ion in MS (n − 1). The HPLC was equipped with a Luna
C18 column (25 cm × 0.46 cm i.d., 5 m particle size; Phenomenex,
Macclesfield, UK) with a C18 security guard (4.0 mm × 3.0 mm) cartridge
system (Phenomenex, Macclesfield, UK). Water:formic acid
(99:5, v/v) and acetonitrile were used as mobile phases A and B,
respectively, with a flow rate of 1 mL min−1. The linear gradient
started with 8% of solvent B, reaching 15% solvent B at 25 min,
22% at 55, and 40% at 60 min, which was maintained up to 70 min
The injection volume was 20 L. Chromatograms were recorded
at 280, 320, 360, and 520 nm Different phenolics were characterised
by chromatographic comparison with analytical standards
as well as quantified by the absorbance of their corresponding
peaks. Hydroxycinnamic derivatives, p-coumaroylquinic acid and
hydroxybenzoic acid were characterised by chromatographic comparisonaccordingly
toprevious reports basedonretentiontime and
UV–vis spectra at 280 nm (Tomás-Barberán et al., 2001). Anthocyanin
standards (cyanidin 3-glucoside, cyanidin 3-rutinoside and
pelargonidin 3-rutinoside) were purchased from Polyphenols SA
(Sandnes, Norway) and detected at 520 nm Cinnamic acids were
quantified as 5-O-caffeoylquinic acid at 320 nm, and flavonols as
quercetin 3-O-rutinoside at 360 nm and expressed as mg 100 g−1
fresh weight (mean ± SE).
Being translated, please wait..
ฟีนอลิกทั้งหมดถูกสกัด ตามขั้นตอนที่อธิบายไว้ในทอม
. kgm s-barber . kgm n et al . ( 2001 ) โดยใช้น้ำเมทานอล ( 2 : 8 )
2 มม. ประกอบด้วยแนฟ ( polyphenol oxidase ยับยั้งและป้องกันการย่อยสลายสารกิจกรรม
) และปริมาณในการทำซ้ำผล folin – ciocalteu และรีเอเจนต์ ( หมายถึง±เซ )
แสดงเป็นมิลลิกรัมเพิ่มขึ้น 100 กรัมน้ำหนักสดเท่ากับ− 1 . สำหรับ
แต่ละสารประกอบฟีนอล , โปรโตคอลอธิบายโดย giron é svilaplana
et al . ( 2012 ) ได้ตาม สั้น , ตัวอย่าง lyophilised
( 100 มก. ) จำนวน 1 มิลลิลิตร ผสมกับเมทานอลกรดน้ำ /
( 25:1:24 , V / V / V ) vortexed sonicatedinanultrasonic , bathfor 60 นาที
ไฟฟ้าที่ 10500 × g 5 นาทีสูงคือกรอง
ผ่าน 0.45-m PVDF ( millex hv13 มิลลิ , กรอง , ฟอร์ด
มาสหรัฐอเมริกา ) และใช้สำหรับการวิเคราะห์ปริมาณซูโครส การ hplc-dad-esi / MSN /
ทดลองในด้าน HPLC 1100 ชุดเครื่อง
พร้อมโฟโตไดโอดเรย์ตรวจจับและเครื่องตรวจจับมวล
ในชุด ( Agilent Technologies , waldbronn , เยอรมัน ) อุปกรณ์
ประกอบด้วยปั๊มไบนารี ( แบบ g1312a ) , autosampler ( แบบ g1313a ) , degasser ( แบบ g1322a ) และโฟโตไดโอด
เรย์ตรวจจับ ( แบบ g1315b )ระบบ HPLC ถูกควบคุมโดยซอฟต์แวร์ chemstation
( Agilent , รุ่น 08.03 ) เครื่องตรวจจับมวล
เป็นไอออนกับดัก Spectrometer ( แบบ g2445a ) พร้อมกับ
วิธีพ่นละอองไฟฟ้า ionisation อินเตอร์เฟซและควบคุมโดย lcmsd ซอฟต์แวร์
( Agilent , รุ่น 4.1 ) เงื่อนไข ionisation จำนวน 350 ◦ C
4 กิโล สำหรับอุณหภูมิแรงดันและ C ตามลำดับ โดย Nebuliser
ความดันและอัตราการไหลของไนโตรเจนมีค่า 65.0 ปอนด์ 11 ลิตร / นาที
ตามลำดับ เต็มสแกนมวลครอบคลุมจาก 100 ถึง 1200 m / Z .
ทะเกิดการแตกแยกทดลอง
ในกับดักไอออนใช้ฮีเลียมเป็นก๊าซที่มีแรงดันชนก ,
เพิ่มรอบตั้งแต่ 0.3 ถึง 2V ข้อมูลมวลสาร
ได้มาในโหมด ionisation บวก
แอนโทไซยานินและในโหมด ionisation ลบสารฟลาโวนอยด์อื่น ๆ MSN
ถูกหามออกในโหมดอัตโนมัติบนไอออนเบสมากมาย
เพิ่มเติมใน MS ( − 1 ) กรัมเป็นอุปกรณ์ที่มีลูน่า
คอลัมน์ C18 25 cm × 0.46 ซม. บัตร ขนาดอนุภาค phenomenex 5 M ;
, Macclesfield , สหราชอาณาจักร ) กับ c18 พนักงานรักษาความปลอดภัย ( 4.0 มม. × 3.0 มม. ) ระบบตลับ
( phenomenex Macclesfield , สหราชอาณาจักร ) น้ำ : กรด ( 99:5
,v / v ) และไนถูกใช้เป็นมือถือเฟส A และ B
) ด้วยอัตราการไหล 1 มิลลิลิตรต่อนาที− 1
ลาดเชิงเส้นเริ่มต้นกับ 8% ของตัวทำละลาย B ถึง 15% ตัวทำละลาย B 25 นาทีที่ 55
22 % และ 40% ที่ 60 นาที ซึ่งเป็นที่เก็บรักษาไว้ถึง 70 นาที
ฉีดปริมาณ 20 ลิตร กลิ่นที่ถูกบันทึกไว้
ที่ 280 , 320 , 360 , 520 nm และผลที่แตกต่างกัน มีลักษณะ
โดยเมื่อเปรียบเทียบกับมาตรฐานวิเคราะห์
เป็นวัดโดยการดูดกลืนแสงของยอดเหมือนกัน
. hydroxycinnamic อนุพันธ์ , กรดและกรด p-coumaroylquinic
hydroxybenzoic มีลักษณะโดยโครมาโตกราฟี comparisonaccordingly
พูดคุยบทความก่อนหน้านี้รายงาน basedonretentiontime
– UV VIS และสเปกตรัมที่ 280 nm ( ทอม . kgm s-barber . kgm n et al . , 2001 ) แอนโธไซยานิน
มาตรฐาน ( ไซยานิดิน 3-glucoside 3-rutinoside , ไซยานิดินและ
pelargonidin 3-rutinoside ) ซื้อจาก โพลีฟีนอล ซา
( Sandnes นอร์เวย์ ) และตรวจพบปริมาณกรดซินนามิก ( 520 nm
เป็น 5-o-caffeoylquinic กรดที่ 320 nm และ flavonols ที่
เคอร์ 3-o-rutinoside 360 nm และแสดงเป็นมิลลิกรัมต่อ 100 กรัมน้ำหนักสด − 1
( หมายถึง±เซ
)
. kgm s-barber . kgm n et al . ( 2001 ) โดยใช้น้ำเมทานอล ( 2 : 8 )
2 มม. ประกอบด้วยแนฟ ( polyphenol oxidase ยับยั้งและป้องกันการย่อยสลายสารกิจกรรม
) และปริมาณในการทำซ้ำผล folin – ciocalteu และรีเอเจนต์ ( หมายถึง±เซ )
แสดงเป็นมิลลิกรัมเพิ่มขึ้น 100 กรัมน้ำหนักสดเท่ากับ− 1 . สำหรับ
แต่ละสารประกอบฟีนอล , โปรโตคอลอธิบายโดย giron é svilaplana
et al . ( 2012 ) ได้ตาม สั้น , ตัวอย่าง lyophilised
( 100 มก. ) จำนวน 1 มิลลิลิตร ผสมกับเมทานอลกรดน้ำ /
( 25:1:24 , V / V / V ) vortexed sonicatedinanultrasonic , bathfor 60 นาที
ไฟฟ้าที่ 10500 × g 5 นาทีสูงคือกรอง
ผ่าน 0.45-m PVDF ( millex hv13 มิลลิ , กรอง , ฟอร์ด
มาสหรัฐอเมริกา ) และใช้สำหรับการวิเคราะห์ปริมาณซูโครส การ hplc-dad-esi / MSN /
ทดลองในด้าน HPLC 1100 ชุดเครื่อง
พร้อมโฟโตไดโอดเรย์ตรวจจับและเครื่องตรวจจับมวล
ในชุด ( Agilent Technologies , waldbronn , เยอรมัน ) อุปกรณ์
ประกอบด้วยปั๊มไบนารี ( แบบ g1312a ) , autosampler ( แบบ g1313a ) , degasser ( แบบ g1322a ) และโฟโตไดโอด
เรย์ตรวจจับ ( แบบ g1315b )ระบบ HPLC ถูกควบคุมโดยซอฟต์แวร์ chemstation
( Agilent , รุ่น 08.03 ) เครื่องตรวจจับมวล
เป็นไอออนกับดัก Spectrometer ( แบบ g2445a ) พร้อมกับ
วิธีพ่นละอองไฟฟ้า ionisation อินเตอร์เฟซและควบคุมโดย lcmsd ซอฟต์แวร์
( Agilent , รุ่น 4.1 ) เงื่อนไข ionisation จำนวน 350 ◦ C
4 กิโล สำหรับอุณหภูมิแรงดันและ C ตามลำดับ โดย Nebuliser
ความดันและอัตราการไหลของไนโตรเจนมีค่า 65.0 ปอนด์ 11 ลิตร / นาที
ตามลำดับ เต็มสแกนมวลครอบคลุมจาก 100 ถึง 1200 m / Z .
ทะเกิดการแตกแยกทดลอง
ในกับดักไอออนใช้ฮีเลียมเป็นก๊าซที่มีแรงดันชนก ,
เพิ่มรอบตั้งแต่ 0.3 ถึง 2V ข้อมูลมวลสาร
ได้มาในโหมด ionisation บวก
แอนโทไซยานินและในโหมด ionisation ลบสารฟลาโวนอยด์อื่น ๆ MSN
ถูกหามออกในโหมดอัตโนมัติบนไอออนเบสมากมาย
เพิ่มเติมใน MS ( − 1 ) กรัมเป็นอุปกรณ์ที่มีลูน่า
คอลัมน์ C18 25 cm × 0.46 ซม. บัตร ขนาดอนุภาค phenomenex 5 M ;
, Macclesfield , สหราชอาณาจักร ) กับ c18 พนักงานรักษาความปลอดภัย ( 4.0 มม. × 3.0 มม. ) ระบบตลับ
( phenomenex Macclesfield , สหราชอาณาจักร ) น้ำ : กรด ( 99:5
,v / v ) และไนถูกใช้เป็นมือถือเฟส A และ B
) ด้วยอัตราการไหล 1 มิลลิลิตรต่อนาที− 1
ลาดเชิงเส้นเริ่มต้นกับ 8% ของตัวทำละลาย B ถึง 15% ตัวทำละลาย B 25 นาทีที่ 55
22 % และ 40% ที่ 60 นาที ซึ่งเป็นที่เก็บรักษาไว้ถึง 70 นาที
ฉีดปริมาณ 20 ลิตร กลิ่นที่ถูกบันทึกไว้
ที่ 280 , 320 , 360 , 520 nm และผลที่แตกต่างกัน มีลักษณะ
โดยเมื่อเปรียบเทียบกับมาตรฐานวิเคราะห์
เป็นวัดโดยการดูดกลืนแสงของยอดเหมือนกัน
. hydroxycinnamic อนุพันธ์ , กรดและกรด p-coumaroylquinic
hydroxybenzoic มีลักษณะโดยโครมาโตกราฟี comparisonaccordingly
พูดคุยบทความก่อนหน้านี้รายงาน basedonretentiontime
– UV VIS และสเปกตรัมที่ 280 nm ( ทอม . kgm s-barber . kgm n et al . , 2001 ) แอนโธไซยานิน
มาตรฐาน ( ไซยานิดิน 3-glucoside 3-rutinoside , ไซยานิดินและ
pelargonidin 3-rutinoside ) ซื้อจาก โพลีฟีนอล ซา
( Sandnes นอร์เวย์ ) และตรวจพบปริมาณกรดซินนามิก ( 520 nm
เป็น 5-o-caffeoylquinic กรดที่ 320 nm และ flavonols ที่
เคอร์ 3-o-rutinoside 360 nm และแสดงเป็นมิลลิกรัมต่อ 100 กรัมน้ำหนักสด − 1
( หมายถึง±เซ
)
Being translated, please wait..
Other languages
The translation tool support: Afrikaans, Albanian, Amharic, Arabic, Armenian, Azerbaijani, Basque, Belarusian, Bengali, Bosnian, Bulgarian, Catalan, Cebuano, Chichewa, Chinese, Chinese Traditional, Corsican, Croatian, Czech, Danish, Detect language, Dutch, English, Esperanto, Estonian, Filipino, Finnish, French, Frisian, Galician, Georgian, German, Greek, Gujarati, Haitian Creole, Hausa, Hawaiian, Hebrew, Hindi, Hmong, Hungarian, Icelandic, Igbo, Indonesian, Irish, Italian, Japanese, Javanese, Kannada, Kazakh, Khmer, Kinyarwanda, Klingon, Korean, Kurdish (Kurmanji), Kyrgyz, Lao, Latin, Latvian, Lithuanian, Luxembourgish, Macedonian, Malagasy, Malay, Malayalam, Maltese, Maori, Marathi, Mongolian, Myanmar (Burmese), Nepali, Norwegian, Odia (Oriya), Pashto, Persian, Polish, Portuguese, Punjabi, Romanian, Russian, Samoan, Scots Gaelic, Serbian, Sesotho, Shona, Sindhi, Sinhala, Slovak, Slovenian, Somali, Spanish, Sundanese, Swahili, Swedish, Tajik, Tamil, Tatar, Telugu, Thai, Turkish, Turkmen, Ukrainian, Urdu, Uyghur, Uzbek, Vietnamese, Welsh, Xhosa, Yiddish, Yoruba, Zulu, Language translation.
- Breathing
- On doem
- Plums (Prunus salicina Lindl.) are nutri
- communi
- find the relationship of the variables t
- pose
- ฉันไม่ใช่พยาบาล เเต่ฉันกำลังเรียนพยาบาล
- fuerit
- sự gây ra
- Two plum (Prunus salicina Lindl.) cultiv
- โดย
- แคร์เราด้วยหราาาา
- consensu
- สตอร์เบอร์รี
- Bullshit
- dù có gây ảnh hưởng
- 1) หาความสัมพันธ์ของตัวแปรต่างๆที่มีผลกร
- pertineat
- You nurses are really working hard
- illud
- The relationship of the various paramete
- duntaxat
- find the relationship of the variables t
- On do em
